aplicación de la citometría de flujo en el diagnóstico inmunológico de los linfomas cutáneos t application of flow cytometry in the immunological diagnosis of cutaneous t-cell lymphomas

aplicación de la citometría de flujo en el diagnóstico inmunológico de los linfomas cutáneos t application of flow cytometry in the immunological diagnosis of cutaneous t-cell lymphomas

;Bertha B. Socarrás Ferrer;Lázaro O. del Valle Pérez;Vianed Marsán Súarez;Miriam Sánchez Segura;Ruby Alonso Ramírez;Consuelo Macías Abraham
zhonghua xue ye xue za zhi = zhonghua xueyexue zazhi 2008 Vol. 24 pp. 0-
223
ferrer2008revistaaplicacin

Abstract

Se comunican las características inmunofenotípicas de 7 pacientes (5 del sexo masculino y 2 del femenino) con el diagnóstico clínico-morfológico de linfomas cutáneos de células T, atendidos en la consulta de Hematología del Instituto de Hematología e Inmunología. La edad de los pacientes osciló entre 17 y 88 años. El inmunodiagnóstico se realizó por inmunofluorescencia directa con un panel de anticuerpos monoclonales que incluyó marcadores linfoides B y T: CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8, CD19, CD22 y CD25. La lectura se realizó en un clitómetro de flujo FaCScan (Becton-Dickinson ). Cada marcador se consideró positivo si un porcentaje mayor al 20 % de los linfocitos expresaba el antígeno. Nuestros resultados mostraron que en la mayoría de los pacientes predominó el patrón general de los linfocitos T con función auxiliadora (CD3+, CD4+, CD8-). Se corrobora que la citometría de flujo es un procedimiento más rápido y menos laborioso que otros métodos de inmunofenotipaje celular, que nos permite un diagnóstico de certeza y la aplicación de una terapia efectiva.
The immunophenotypic characteristics of 7 patients (5 males and 2 females) with clinicomorphological diagnosis of cutaneous T-cell lymphomas that received attention at the Hematology Department of the Institute of Hematology and Immunology were reported. The age ot the patients ranged from 17 to 88 years old. The immunodiagnosis was obtained by direct immunofluorescence with a panel of monoclonal antibodies that included B and T lymphoid markers: CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8, CD19, CD22 and CD25. The reading was made in a FaCScan flow cytometer (Becton-Dickinson). Each marker was considered positive if a percentage over 20 % of the lymphocytes expressed the antigen. Our results showed the predominance in most of the patients of a general pattern of T-lymphocytes with auxiliary function (CD3+, CD4+, CD8-). It was corroborated that flow cytometry was a faster and less laborious method than other cellular immunophenotyping methods, and that it allowed to have an accurate diagnosis and to apply an effective therapy.

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